DNA-Geschlechtsbestimmung
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Proben : Feder oder Eierschale oder trockenes Blut auf Papier

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DNA-Geschlechtsbestimmung

DNA-Sexing in Genimal in wenigen Worten

DNA-Sexing ist heute die beste Methode, um das Geschlecht der Vögel zu bestimmen. Daher gibt Genimal Biotechnologies vogelzüchtern die Möglichkeit, das Geschlecht ihrer Vögel mit Genauigkeit und kurzer Verzögerung zu bestimmen.

  • Zuverlässigkeit: Fast 100%. Möglichkeit, das Ergebnis in 1 Tag mit die express-option
  • Test-Turnaround : 1 – 3 Tage
  • Proben: Federn oder Trockenes Blut auf dem Papier oder Eierschale
  • Arten : Wir können DNA-Sexing auf allen Vogelarten tun. Wir können jedoch keine gesexten Laufvögel (Strauß, Rhea, Emu) und einige glänzende Stars.
  • Bedingungen : Bestellen Sie ab und zu einem Jahr eine Packung DNA-Sexing und senden Sie dann Ihre Proben zu verschiedenen Zeiten innerhalb der Grenze von 2 Jahren. Zum Beispiel können Sie 2 Proben morgen senden, 3 andere in zwei Monaten usw.

Warum machen DNA-Sexings bei Vögeln

Das Sexing von Vögeln ist ein großes Problem in der Zucht, weil es erlaubt, mit Sicherheit Paare zu bilden, um sie zu reproduzieren. Das Platzieren von zwei Individuen des gleichen Geschlechts in der gleichen Voliere erhöht auch das Risiko von Aggression und Dominanz eines Vogels über den anderen. Ein Paar mit Sicherheit dank DNA-Sexing zu haben, ist daher eine Zeitersparnis bei der Gewinnung von Küken.
Aus forschungswissenschaftlicher Sicht wird das DNA-Sexing von Vögeln in Populationsstudien oft nachgefragt. In der Tat ermöglicht es, das Geschlechterverhältnis in Vogelpopulationen zu untersuchen (Conover & Hunt 1988; Parkes 1989; Olson & Arsenault 2000), um die Hypothese der sexuellen Selektion zu untersuchen (Méller 1993; Savalli 1995; Regosin & Pruett-Jones 2001), um die Paarungssysteme zu untersuchen (z. B. Poinani & Pagel 1997; Sorenson & Payne) oder die ökologische Nischendifferenzierung zu untersuchen (z.B. Richman & Preis 1992; z.B. Cicero & Johnson 1998).

Die Unterschiede zwischen Männchen und Weibchen bei Vögeln

Bei Vögeln zeigen viele Arten keinen sichtbaren Unterschied zwischen Männchen und Weibchen. Dies wird als Abwesenheit von sexuellem Dimorphismus bezeichnet. So zeigen bei Passerinen mehr als 60% der Art keinen sexuellen Dimorphismus (PREIS & BIRKe 1996). Bei Nicht-Passerinen haben mehr als 80% der Arten keinen sexuellen Dimorphismus. Bei einigen Arten treten die visuellen Unterschiede zwischen Männchen und Weibchen erst einige Wochen nach dem Schlüpfen auf. In diesem Fall ist die Verwendung von DNA-Sexing obligatorisch.
Bei Vögeln mit einem sexuellen Dimorphismus sind die Unterschiede zwischen Männchen und Weibchen von mehreren Arten, aber oft unzuverlässig:

  • Unterschied in der Gefiederfarbe. Die Unterschiede im Gefieder zwischen dem Männchen und dem Weibchen können sehr wichtig sein, da es Edelpapagei Zum Beispiel. Diese Unterschiede können sehr leichtwie in der Lybius dubius und oft die Verwendung von DNA-Sexing rechtfertigen. Die Farbunterschiede in einigen Arten erscheinen spät, mehrere Monate nach dem Schlüpfen und daher ist die Verwendung von DNA-Sexing obligatorisch.
  • Größenunterschied. Im Allgemeinen sind Männer im Allgemeinen größer und schwerer als Frauen. Das wichtigste Beispiel findet sich im Hornvogel (z.B. Bycanistes brevis) bei Männern, die im Durchschnitt 1/3 mehr Gewicht haben als Frauen. Andererseits ist der Größenunterschied bei mehr als 99 % der Arten aufgrund der Nahrungs- und Brutbedingungen zu gering und mehr. In diesem Fall ist die Verwendung von DNA-Sexing obligatorisch.
  • Unterschied im Stehen. Bei einigen Arten wird ein anderes Standing bei Männchen und Weibchen beobachtet. Die Männchen stehen aufrecht und stolz auf dem Barsch. Dieser Unterschied bleibt subtil, unzuverlässig und variabel je nach Art. DNA-Sexing wird daher in der Regel praktiziert.
  • Singen. Bei einigen Arten singt nur das Männchen, wodurch das Männchen vom Weibchen unterschieden wird. Bei anderen Arten singen beide Geschlechter oder nicht oder nicht sehr diskret. Diese Sexing-Methode bleibt unzuverlässig und es ist notwendig, zu warten, bis die Vögel Erwachsene sind und während der Brutzeit in der Lage, sie zu sexen.

Was sind die verschiedenen Methoden des Sexing?

Es gibt verschiedene Tier- und Labormethoden für Sexing Vögel:

  • Endoskopie ist eine alte Methode, die heute selten verwendet wird. Diese Methode wird nicht empfohlen, da sie für den Vogel invasiv ist. In der Tat erfordert es eine Anästhesie des Vogels und eine Operation an der koelomischen Höhle. Diese Methode gilt auch bei Vögeln, die keine Geschlechtsreife erreicht haben (Erwachsene), als unzuverlässig. In der Tat, nach seiner Erfahrung, der Tierarzt kann Schwierigkeiten bei der Unterscheidung der männlichen und weiblichen Genitalien haben.
  • Die hormonelle Dosierung. Einige Veröffentlichungen zeigen die Möglichkeit, Vögel zu sexieren, indem sie bestimmte Sexualhormone wie DHEA und Estradiol messen. Diese Methode erfordert die Entwicklung der durchschnittlichen Hormonkonzentration in jeder Art. Die Konzentration des Hormons in einem Vogel variiert auch je nach Alter und Stadium während seines Fortpflanzungszyklus. All diese Unsicherheiten machen diese Methode des Sexings nicht existent.
  • Der Karyotyp. Bei dieser Methode werden die Chromosomen von Vögeln isoliert und beobachtet. Auf der Ebene der Geschlechtschromosomen hat das Weibchen ein Z-Chromosom und ein W-Chromosom. Das Männchen hingegen hat zwei Z-Chromosomen und kein W-Chromosom. Diese Labortechnik ist lang, mühsam und teuer und daher heute nicht mehr praktiziert.
  • DNA-basierte Methode. Zahlreiche Methoden, die auf der DNA-Untersuchung basieren, wurden historisch entwickelt. Die wichtigsten waren die Analysen auf Basis von Southern Blot, RFLP, die Verwendung von DNA-Minisatelliten oder sogar Echtzeit-PCR. Diese Methoden sind zuverlässig, aber oft komplizierter und teurer als herkömmliches DNA-Sexing und werden daher selten verwendet.

Neuere Methoden als DNA-Sexing wurden in den letzten Jahren entwickelt, wie HRM PCR oder isothermale Amplifikationen. Die sehr präzise HRM PCR erfordert eine komplexe und kostspielige Entwicklung für jede Vogelart und wird daher nur selten eingesetzt. Isothermale Amplifikationen erfordern sehr wenig Ausrüstung und ermöglichen Sexing auf dem Feld, wenn es kein Labor gibt. Diese Methode bleibt jedoch teuer, und viele Anpassungen sind für jede Art notwendig, um den Test zuverlässig zu machen.

Die Methode des DNA-Sexings

Wie bei Menschen und den meisten Tieren wird das Geschlecht der Vögel durch zwei Chromosomen bestimmt, die “Geschlechtschromosomen”. Bei Vögeln haben Männchen zwei identische Geschlechtschromosomen namens ZZ. Bei Frauen unterscheiden sich diese beiden Chromosomen jedoch und heißen ZW. Tatsächlich ist das Z-Chromosom daher in beiden Geschlechtern vorhanden, während das W-Chromosom nur bei Frauen vorhanden ist. Die im Labor Genimal Biotechnologies realisierte Methode der DNA-Sexing besteht darin, ein bestimmtes Gen zu detektieren, das zwar auf beiden Chromosomen zu finden ist, aber auf dem W-Chromosom kleiner ist als auf dem Z. Die in den Geschlechtschromosomen vorhandene DNA wird aus den Probenzellen (Federzellen, Blutzellen usw.) isoliert. Ein Stück der DNA, die für DNA-Sexing verwendet wird, wird millionenfach vervielfacht, um es nachweisbar zu machen. Die DNA ist jetzt mit einer bestimmten Maschine nachweisbar, weil sie in Milliarden von Kopien vorhanden ist. Bei Frauen (ZW) werden zwei DNA-Bänder beobachtet. Das erste Band entspricht der Version des großen Gens auf dem Z-Chromosom und das zweite Band der Version des kleinen Gens auf dem W-Chromosom. Bei Männern (ZZ) wird nur ein Band beobachtet, da beide Chromosomen gleich groß sind (Z).
DNA-Extraktion

DNA-Extraktion

Die in den Geschlechtschromosomen vorhandene DNA wird aus den Probenzellen (Federzellen, Blutzellen usw.) isoliert.

DNA-Multiplikation

DNA-Multiplikation

Ein Stück der DNA, die für DNA-Sexing verwendet wird, wird millionenfach vervielfacht, um es nachweisbar zu machen.

detection of DNA

Erkennung des Gens

Die DNA ist jetzt mit einer bestimmten Maschine nachweisbar, weil sie in Milliarden von Kopien vorhanden ist. Bei Frauen (ZW) werden zwei DNA-Bänder beobachtet. Das erste Band entspricht der Version des großen Gens auf dem Z-Chromosom und das zweite Band der Version des kleinen Gens auf dem W-Chromosom. Bei Männern (ZZ) wird nur ein Band beobachtet, da beide Chromosomen gleich groß sind (Z).

Welche Gene werden verwendet?

DNA-Sexing erfordert das Studium eines winzigen Teils der DNA des Vogels. Dieser Teil des Gens wird verwendet, weil er Unterschiede zwischen dem Männchen und dem Weibchen darstellt. Insbesondere ist dies der Unterschied in der Länge des verwendeten DNA-Fragments, was die Erkennung der Geschlechter einfach macht. Das am häufigsten verwendete Gen ist CHD1 (Ellegren 1996; Griffiths et al. 1998; Fridolfsson & Ellegren1999). Einige andere Gene haben ihr Potenzial für DNA-Sexing nachgewiesen, insbesondere das Gen EE0.6 (Itoh et al. 2001), ATP5A1 (Dvorék et al. 1992) oder sogar Wpkci (Hori et al. 2000; O'Neill et al. 2000).

Können wir alle Vogelarten sexen?

Ja, alle Arten können durch DNA gesext werden. Allerdings ist es schwierig, Paleognathae oder Laufvögel zu sexen (de Kloet 2001). Die Laufvögel sind die Strauße, Rhea, Cassowary, Kiwi. Sexing dieser Arten wird daher von Laboratorien nicht angeboten. Die für DNA-Sexing untersuchten Gene und insbesondere das CHD1-Gen variieren je nach Art. Aus diesem Grund wird manchmal eine Aktualisierung für jede Art von den Laboratorien angefordert. Heutzutage ermöglichen aktuelle Analyse-Tools, die Notwendigkeit loszuwerden, einen männlichen und weiblichen Zeugen für jede Art zu haben. Genimal Biotechnologies verfügt über modernste Ausrüstung und mehr als 10 Jahre Know-how. Daher brauchen wir sehr selten einen Zeugen, um 100% Zuverlässigkeit für DNA-Sexing zu gewährleisten.

Wie zuverlässig ist DNA-Sex?

Die Zuverlässigkeit des DNA-Sexings hängt von den Laboratorien ab. Genimal ist seit über 10 Jahren Experte für DNA-Sexing und mehr als 90.000 DNA-Sexings. Für DNA-Sexing haben wir eine automatisierte Plattform, um die Prozesse zu standardisieren und Probeninversion oder Kontamination zu vermeiden. Die Zuverlässigkeit von Genimal ist in ganz Europa anerkannt und wir sind das erste Labor, das 100% Zuverlässigkeit garantiert.

Was sind die Fristen für DNA-Sexing?

Das Genimal-Labor führt täglich DNA-Sexing-Analysen durch und daher sind Verzögerungen in der Regel 24 Stunden. Dieser Zeitraum kann geringfügig verlängert werden, wenn die Probe ein Problem mit der Menge oder Qualität der DNA hat. Die maximale Verzögerung beträgt 3 Tage. Genimals analytische Kapazität für DNA-Sexing beträgt 1.000 Proben pro Tag.

Aus welchen Proben typen niert sich DNA-Sexing?

In den allermeisten Fällen wird DNA-Sexing von der Glühbirne der Feder auch Calamus genannt (Malaga-Jr et al., 2002). Wir können auch Sexvögel mit Blut oder die geschlüpften Eierschale. Genimal war das erste Labor, das Sexing mit Eierschalen im Jahr 2011 anbiete. Wir sind führend in der DNA-Sexing mit Eierschale.

Zertifikat-Beispiel für den Test: DNA-Geschlechtsbestimmung

Klicken Sie auf das Beispielzertifikat um es zu öffnen.

Zertifikat

Referenzen

DNA sexing article in Wikipedia. Lesen Sie den Artikel A DNA test to sex most birds. Griffiths R, Double MC, Orr K, Dawson RJ. Mol Ecol. 1998 Aug;7(8):1071-5. Lesen Sie den Artikel A simple and universal method for molecular sexing of non-ratite birds. Fridolfsson, AK, Ellegren, H. J Avian Biol 1999;30:116–121. Lesen Sie den Artikel Sex identification in birds using two CHD genes. Griffiths, R. Proc Biol Sci 1996;263:1251–1256. Lesen Sie den Artikel
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